在生物學和醫(yī)學研究中，細胞計數是一項基礎且重要的實驗技術。傳統(tǒng)的細胞計數方法如血球計數板雖然直觀，但操作繁瑣且易引入誤差。相比之下，比色法，特別是MTT（3-(4,5)-dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenyltetrazolium bromide，即噻唑藍）比色法，以其高靈敏度和經濟性，在細胞存活和生長檢測中得到了廣泛應用。本文將詳細介紹MTT比色法的原理、實驗步驟及其在細胞計數中的應用。

MTT比色法原理

MTT比色法是一種基于活細胞線粒體琥珀酸脫氫酶活性的檢測方法?；罴毎€粒體中的琥珀酸脫氫酶能將外源性的MTT還原為水不溶性的藍紫色結晶甲瓚（Formazan），并沉積在細胞內。而死細胞由于缺乏此酶活性，無法形成甲瓚結晶。隨后，利用二甲基亞砜（DMSO）溶解細胞中的甲瓚結晶，并通過酶聯免疫檢測儀在特定波長（通常為490nm或570nm）下測定其光吸收值（OD值），從而間接反映活細胞的數量。在一定細胞數范圍內，MTT結晶形成的量與細胞數成正比。

實驗步驟

1. MTT溶液的配制

• 材料：MTT粉末、磷酸緩沖液（PBS，pH=7.4）或無酚紅的培養(yǎng)基、0.22μm濾膜、鋁箔紙。

• 步驟：稱取MTT 0.5克，溶于100ml PBS中，用0.22μm濾膜過濾以除去細菌，放4℃避光保存。配制過程中，容器最好用鋁箔紙包住以避免光照分解。

2. 細胞接種與培養(yǎng)

• 材料：培養(yǎng)瓶、96孔板、移液管、培養(yǎng)基（含10%胎小牛血清）、胰蛋白酶等。

• 步驟：收集對數期細胞，調整細胞懸液濃度至適當范圍（如1000-10000個/ml），接種于96孔板中，每孔加入100-200μl細胞懸液，置于37℃、5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)至細胞貼壁或達到實驗所需狀態(tài)。

3. MTT處理與孵育

• 步驟：向每孔加入10μl MTT溶液（5mg/ml），繼續(xù)培養(yǎng)4小時。MTT被活細胞線粒體中的琥珀酸脫氫酶還原為甲瓚結晶并沉積在細胞內。

4. 結晶溶解與比色

• 步驟：終止培養(yǎng)后，小心吸去孔內培養(yǎng)液（對于懸浮細胞需先離心）。每孔加入100μl DMSO，置搖床上低速振蕩10分鐘，使甲瓚結晶充分溶解。使用酶聯免疫檢測儀在490nm或570nm波長下測定各孔的光吸收值（OD值）。

5. 數據處理與分析

• 步驟：記錄各孔的OD值，根據實驗設計進行數據處理和分析。通常，以時間為橫坐標，OD值為縱坐標繪制細胞生長曲線，以反映細胞增殖情況。

應用與注意事項

應用

MTT比色法已廣泛用于生物活性因子的活性檢測、大規(guī)模的抗腫瘤藥物篩選、細胞毒性試驗以及腫瘤放射敏感性測定等領域。其高靈敏度和經濟性使得該方法成為細胞生物學研究中的重要工具。

注意事項

1. MTT溶液的配制與保存：MTT溶液應現用現配，避免反復凍融。配制好的溶液應置于4℃避光保存，并在兩周內使用完畢。

2. 細胞接種濃度與培養(yǎng)時間：選擇合適的細胞接種濃度和培養(yǎng)時間對于實驗結果的準確性至關重要。不同細胞類型的最佳接種濃度和培養(yǎng)時間可能有所不同，需通過預實驗確定。

3. 實驗條件控制：實驗過程中應嚴格控制培養(yǎng)條件（如溫度、CO2濃度等），以減少外界因素對實驗結果的影響。

4. OD值范圍：為了保證實驗結果的線性關系，MTT實驗的OD值最好在0-0.7范圍內。超出此范圍時，OD值與細胞數之間的線性關系可能不再成立。

5. 防止污染：實驗過程中應注意無菌操作，避免細胞污染對實驗結果的影響。

結論

MTT比色法作為一種高效、靈敏的細胞計數方法，在生物學和醫(yī)學研究中具有廣泛的應用前景。通過掌握其原理、實驗步驟及注意事項，可以更加準確地進行細胞計數和生長狀況分析，為科學研究提供有力支持。